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castPCR Genotyping Master Mix
castPCR Genotyping Master Mix
產(chǎn)品編號:P4310
產(chǎn)品規(guī)格:5*1mL/10*1mL
產(chǎn)品價格:1700/3200
包裝:支
儲存條件:-20℃
castPCR Genotyping Master Mix
包裝規(guī)格:
| 目錄 | 產(chǎn)品名稱 | 規(guī)格 | 目錄價 |
| P4310-5 | castPCR Genotyping Master Mix | 5*1ml | 1700 |
| P4310-10 | castPCR Genotyping Master Mix | 10*1ml | 3200 |
儲運溫度:
-20℃長期保存,避免反復凍融,短期使用可放4℃。
產(chǎn)品說明:
castPCR Genotyping Master Mix是采用Taqman探針法競爭性等位基因特異性PCR技術(Competitive Allele-Specific Taqman PCR,castPCR)進行SNP分析以及檢測InDels (Insertions and Deletions,插入和缺失)的專用2 x 預混液,只需要額外加入預先設計好的Allele 1特異檢測引物,Allele 2特異檢測引物,Locus特異擴增引物,模板和滅菌蒸餾水即可進行SNP分析以及檢測InDels,使用方便,采用全自動核酸提取儀、PCR儀,3 種熒光的熒光定量PCR 儀或多通道熒光讀板機(酶標儀),靈活采用96孔板、384孔板,一天可檢測幾萬個SNP 位點。
精心研制的抗體修飾熱啟動Taq酶,Allele 1 FAM 熒光通用引物和Allele 2 HEX 熒光通用引物,配合反復優(yōu)化的Buffer,增強了在低濃度和復雜模板上的分型成功率,同時本產(chǎn)品提供ROX Reference Dye用于校正加樣孔之間的體積誤差和熒光信號誤差,不用Reference Dye校正的qPCR擴增儀器,使用時無需添加ROX。
實驗過程:
用Real-time PCR system型熒光定量PCR儀,采用基因分型-終點測定法對樣品進行檢測。96孔PCR 板及384 孔板最小反應體系分別為10μL和5μL。
1. 反應液的配置分裝,務必使用無污染的新吸頭,EP管,盡量避免污染。
2. 溶解所有用到的試劑,輕柔上下顛倒混勻,短暫瞬時離心將溶液甩至管底;
3.按下列組份配制qPCR混合液,將除模板以外的試劑混成mix,再分裝到單個PCR管內(nèi),最后加入模板DNA。
|
PCR體系配制 |
體積(5μL體系) |
體積(10μL體系) |
體積(20μL體系) |
|
2 x castPCR Genotyping Master Mix |
2.5μL |
5μL |
10μL |
|
Allele 1 primer(10μM) |
0.075μL |
0.15μL |
0.3μL |
|
Allele 2 primer(10μM) |
0.075μL |
0.15μL |
0.3μL |
|
Common primer(10μM) |
0.2μL |
0.4μL |
0.8μL |
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DNA template |
10-100 ng |
10-100 ng |
10-100 ng |
|
ddH2O |
補水至5μL |
補水至10μL |
補水至20μL |
注意:長期保存2 x castPCR Genotyping Master Mix置于-20℃,4℃保存可保存1周,凍融請勿超過 3 次。
4.短暫瞬時離心后放入熒光定量PCR儀中運行,qPCR反應程序如下:
|
實驗流程 |
溫度 |
時間 |
循環(huán)數(shù) |
檢測熒光 |
|
預變性 |
94℃ |
15 min |
1 X |
Off |
|
變性 |
94℃ |
20 sec |
10 X |
Off |
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退火-延伸 |
61-55℃ |
60 sec(下降 0.6℃/循環(huán)) |
Off |
|
|
變性 |
94℃ |
20 sec |
26-32 X |
Off |
|
退火-延伸 |
55℃ |
60 sec |
Off |
|
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熒光采集 |
37℃ |
60 sec |
1 X |
On |
5.其他循環(huán)條件:
如果未獲得明確的基因分型簇,則應將平板熱循環(huán)額外3-10個循環(huán),并再次讀取。
|
實驗流程 |
溫度 |
時間 |
循環(huán)數(shù) |
檢測熒光 |
|
變性 |
94℃ |
20 sec |
3-10 X |
Off |
|
退火-延伸 |
55℃ |
60 sec |
Off |
|
|
熒光采集 |
37℃ |
60 sec |
1 X |
On |
分型失敗問題分析:
若分型失敗,請嘗試以下幾種解決方案:
(1)DNA 濃度過低。保證每個反應體系內(nèi)有 10ng 以上模板DNA,大基因組物種如小麥,請保證 100ng 以上。
(2)DNA 含有大量 PCR 抑制劑,請將模板進行梯度稀釋再次嘗試,或者重新純化 DNA。
(3)DNA 濃度嚴重不均一,分型較差的樣本 DNA 含量過低。請重新準備 DNA 樣本。
(4)PCR 循環(huán)太少。
(5)實際上分型已經(jīng)成功,但群體中只有一種等位基因型,因缺乏其它等位基因的對照,導致分型誤判。
(6)引物自身擴增差。請更換擴增好的引物進行實驗。
(7)引物失效,請重新合成引物。
(8)試劑失效。請在有效期內(nèi)使用 。請將待使用的 試劑儲存在-20℃冰箱中,并減少凍融次數(shù)。
(9)使用不合格 PCR 板(管),請確認該耗材可以正常進行 PCR 擴增。在潔凈度差的場所生產(chǎn)的板子,或者某些帶有熒光增白劑的 PCR 板(尤其是部分白色板子),有非常嚴重的自熒光現(xiàn)象,導致信號異常。
(10)若只有雜合和一種親本等位基因型,缺少另一種親本等位基因型。A)請檢查群體是否為回交世代;B) 異源多倍體的位點多拷貝現(xiàn)象,請設計單一拷貝特異引物;C)該等位突變純合致死,無純合現(xiàn)象,或純合現(xiàn)象罕見。
(11)若出現(xiàn)單個嚴重離群點,請檢查:A)該 PCR 孔內(nèi)是否有顏色污染;B)該 PCR 孔是否漏加/破損泄露/ 蒸發(fā)。請刪除該數(shù)據(jù)點,并重新實驗。
背景知識:
等位基因特異擴增(Allele specific PCR, ASP)
在 PCR 技術發(fā)明幾年后的 1988年,等位基因特異擴增(ASP)/擴增受阻突變體系(Amplification refractory muta- tion system,ARMS)技術出現(xiàn)。該技術原理簡單,即利用引物3’最后1~4個尤其是最后1個堿基的差異,區(qū)分并特異擴增特定等位基因 DNA 片段。
天然 DNA 聚合酶對 3’最后幾個堿基的復性匹配/錯配選擇并不好,早期應用該技術須有額外的手段保證選擇性。如在引物末端人為引入新錯配,或者調(diào)整 PCR 退火溫度, 但這些手段相對復雜且有穩(wěn)定性問題,一直困擾著這個原理簡單的 SNP 分型技術,因而應用并不廣泛 。
KASP技術從根本上解決了 DNA 聚合酶及 PCR 體系對 SNP 識別的問題,能嚴格進行特異擴增,產(chǎn)生正確的等位基因擴增信號。
熒光共振能量轉(zhuǎn)移(Fluorescence resonance energy transfer,FRET)
熒光基團和對應熒光淬滅基團距離較近時,熒光基團發(fā)出的熒光,會被淬滅基團吸收,發(fā)射出更長波長的熒光或者放出熱量。此時在此熒光對應的波長內(nèi)檢測不到該基團熒光信號。一旦二者分離, 則熒光信號可被檢測到。
采用了 FRET 原理來檢測 FAM 以及 HEX 熒光引物的擴增信號,對應的等位基因發(fā)生擴增時,將出現(xiàn)對應的熒光信號。


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